Описание
Показания
Оборудование
Описание процедуры
Интерпретация
• pH
• Глюкоза
• Кетоны
• Билирубин
• Скрытая кровь (гем)
• Белок
Важные замечания
Приложение. Хранение контейнера с тестовыми полосками

Описание

Рутинная оценка химических свойств мочи собак и кошек включает использование коммерчески доступных колориметрических тестовых полосок, которые обеспечивают качественное и/или полуколичественное измерение следующих химических свойств мочи:
• pH
• глюкоза
• кетоны
• скрытая кровь (гем)
• билирубин
• белок.

Оценка химических свойств мочи – важное диагностическое средство; однако, это всего лишь один из компонентов общего анализа мочи. Результаты данного анализа всегда должны учитываться в контексте истории болезни и данных физикального обследования, при выявлении отклонений принимается решение о ходе дальнейшего обследования.

Тестовые полоски по дизайну имеют одну или более подушку, пропитанную реагентами. Данная подушка изменяет цвет при наличии вещества интереса. В зависимости от количества содержимого вещества в моче происходит пропорциональное изменение цвета.

Изменения цвета также зависят от времени. Производитель дает специфические инструкции относительно необходимого времени ожидания после пропитывания подушки мочой в целях грамотной интерпретации анализов. Всегда следует соблюдать время проведения теста, для повышения диагностической ценности исследования.

Результаты обычно считываются мануально лаборантом. Однако, доступны также автоматические анализаторы тестовых полосок, которые распечатывают результаты анализов вместо персонала. Результаты определяются по степени изменения цвета подушечки по сравнению со шкалой на коробке. После чего каждый результат документируется.

Существует множество различных производимых тестовых полосок, предназначенных как для гуманной, так и для ветеринарной медицины. Так производятся тестовые полоски с различным объемом необходимых образцов. Следует помнить, что не все гуманные тестовые полоски подходят для ветеринарии.

Показания

Моча на 95% состоит из воды, знания о составе оставшихся 5% важны, т.к. отражают водный и электролитный баланс тела, а функцию почек. В порядке снижения концентрации, моча содержит следующие компоненты: мочевина, хлориды, натрий, калий, креатинин, другое, растворенные ионы, неорганические компоненты, органические компоненты (пр. глюкоза), белки, гормоны, метаболиты.

Наличие/отсутствие данных составляющих и объем каждого влияют на здоровье пациента. Способность качественно и/или количественно идентифицировать химические особенности образца мочи дают важные данные для диагностики. Понимание химических особенностей мочи также может облегчить мониторинг лечения и ответа на терапию.

Оборудование

Набор необходимого оборудования:
• свежий образец мочи в чистом контейнере для сбора;
• тестовые полоски;
• таймер для измерения скорости изменения цвета согласно необходимому времени, описанному производителем;
• пипетка для нанесения образцов мочи на подушки тестовых полосок;
• бумажные полотенца, над которыми исследуются тестовые полоски (или другие лабораторные адсорбенты);
• тестовая таблица (обычно расположена на коробке с тестовыми полосками).

Описание процедуры

Подготовить образец мочи и необходимое оборудование. Достать одну тестовую полоску и сразу закрыть контейнер, избегать контакта пальцев с тестовыми подушками. До проведения анализа любого образца – его следует хорошо перемешать, отсутствие перемешивания может привести к техническим ошибкам.

В идеале образец мочи должен быть свежим и закрытым, это обозначает что контейнер с мочой должен быть плотно закрыт (в ожидании анализа), избегая испарения или контаминации. При охлаждении образца в случае отложенного исследования, он должен быть согрет до комнатной температуры до проведения химической оценки.

Мутность образца и пигментурия могут повлиять на аккуратность теста, при тяжелой пигментации и/или мутности применяется центрифугирование до анализа тест полосками; после чего идет работа с надосадочной жидкостью.

Для нанесения мочи на тест полоску могут использоваться два метода:
• иммерсионный метод: тестовая полоска кратковременно и однократно погружается в пробирку с мочой; после извлечения стягивается над абсорбентом; включается таймер и согласно времени, указанному производителем тест полоска располагается у технической таблицы на контейнере, а результат считывается и документируется;
• метод капли из пипетки: расположить тестовую полоску над бумажным полотенцем или сходным лабораторным абсорбентом, при помощи пипетки расположить по капле мочи на каждую подушку тестовый полоски, позволяя полностью ее покрыть; встряхнуть полоску над полотенцем для удаления избытка мочи; включается таймер и согласно времени указанным производителем тест полоска располагается у технической таблицы на контейнере и результат считывается и документируется. Ту же пипетку можно использовать для нанесения капли образца мочи на рефрактометр для определения удельного веса мочи.

Во время исследования следует избегать перенасыщение мочой тестовых полосок и всегда удалять избыток (пр. стряхивать), реагент с соседних тестовых подушек может повлиять на результаты при перетекании, что может происходить при погружении полоски. При нанесении мочи пипеткой практически избегается переход реагента с одной подушки на другую.

Для адекватной интерпретации обязательно хорошее освещение. Всегда следует быть осведомленным с любыми препятствиями визуальной точности или цветовой слепоты, что может изменить определения изменения цвета. В частности, при отклонениях восприятия цвета лаборантом, можно прибегнуть к помощи другого сотрудника или следует приобрести автоматический анализатор.

При анализе всегда следует быть уверенным в правильном расположении тест полосок (не перепутать концы).

Интерпретация результатов следует начинать с конца, т.е. с подушки для определения глюкозы, данная подушка требует наименьшее количестве времени. Начиная с этой подушки, можно просто считывать далее следуя необходимому времени, согласно инструкции производителя.

Таблица. Пример формы для вывода полученных данных.

Показатель	Результат
pH
Белок
Глюкоза
Кетоны
Кровь
Гемоглобин
Билирубин

В случае если тестовые полоски дают противоречивые результаты (пр. цвет тестовых полосок не совпадает с технической таблицей), в таких случаях следует повторить исследование с новой полоской того же или другого производителя.

Интерпретация

Каждая тестовая полоска сравнивается с изменениями цвета в соответствующем ряде цветового блока тестовой таблицы, расположенной на коробке с полосками. Всегда следует строго соблюдать время проведения теста, которое должно быть указано в инструкции от производителя. Для всех тестовых полосок, при отсутствии изменения цвета подушки результат будет отрицательным (исключение составляет подушка с определением рН).

pH

Тестовые полоски обычно измеряют pH в пределах 5.0–8.5. В кислой моче цвет изменяется от оранжевого (pH 5.0) до желтого (pH 6.5). При нейтральной pH (7.0) цвет изменяется до светлого желто-зеленого. Щелочные образцы изменяют цвет от зеленого (pH 8.0) до цвета карибской синевы (pH 8.5). Всегда следует помнить, что любой pH мочи может быть нормальным и изменения рассматриваются в контексте.

Результаты измерения pH при помощи тестовых полосок не отличаются аккуратностью по сравнению с pH-метром, и при необходимости получения точных данных лучше использовать именно pH-метр. Аккуратность определения pH при помощи тестовых полосок находится в пределах ± 0.5 pH единиц. Т.е. если тест показывает значение 6.5, реально рН находится в пределах между 6.0 и 7.0.

Блок. Вероятные причины, изменяющие pH мочи:

• Диета;
– высокое содержание мяса в пище обычно подкисляет мочу, поэтому хищники обычно имеют кислую мочу;
– исключение происходит непосредственно после приема пищи, повышенная секреция соляной кислоты (HCl) в желудке инициирует послеобеденный щелочной сдвиг мочи. Т.е. тело производит щелочную мочу в ответ на кормление для амортизации секреции кислоты желудком.
– диета с богатым растительным компонентом обычно подщелачивает мочу.
• Свежесть образца мочи.
– при хранении в открытом виде pH образца мочи может слегка повышаться по причине потери углекислоты (CO₂) или контаминации детергентами или дезинфектантами.
– хранение мочи в закрытом контейнере при комнатной температуре или при охлаждении в течение 24 часов (как минимум) не изменяют pH мочи, определяемый при помощи рефрактометра.
– при хранении мочи, наличие/отсутствие бактерий производящих уреазу (Streptococcus, Ureaplasma, и Proteus spp.) могут вести к формированию из мочевины аммиака, который подщелачивает образец.
• Препараты:
– подкисление мочи может происходить при применении следующих препаратов: метионин, соли миндальной кислоты, фосфаты, аммония хлорид, хлорид аммония и DL-метионин.
– фуросемид обычно также подкисляет мочу;
– подщелачивание мочи может отмечаться при использовании таких препаратов как цитрат калия, ацетазоламид, бикарбонат.
• Кислотно-щелочной баланс:
– метаболический и дыхательный ацидоз подкисляют мочу;
– метаболический и дыхательный алкалоз подщелачивают мочу.
• Катаболизм – катаболический статус (пр. голодание) связан с подкислением мочи.
• Патологические состояния:
– ацидоз мочи отмечается при лихорадке, при тяжелой рвоте со снижением количества хлоридов, при тяжелом поносе.
– алкалоз мочи отмечается при инфекции мочевыводящих путей с бактериями продуцирующими уреазу обычно Staphylococcus или Proteus spp.

Показатель pH мочи важен, т.к. он может влиять на формирование некоторых типов уролитов. Так струвиты чаще формируются в щелочной моче, при этом кошки и собаки находятся в зоне риска формирования струвитов. При терапии струвитов важно проводить мониторинг подкисления мочи. Другой пример, цистиновые кристаллы предпочитают кислую мочу.

Примечания

• У собак pH мочи измеряемое тестовыми полосками может быть переоценено.
• Перетекание реагентов с прилегающей полоски для определения белка может вести к ложно низкому pH.
• Пигментурия и мутность мочи может влиять на аккуратность теста.
• Клетки и цилиндры имеют тенденцию к разрушению в щелочной моче (pH >8.0). Поэтому, при повышении рН мочевой осадок могут выглядеть тихим, но по факту эритроциты и лейкоциты присутствуют. Не стоит исключать воспаление и/или инфекцию при рН мочи 8.0 и выше, осадок в таких случаях выглядит непримечательно.
• Кристаллурия не гарантирует наличие уролитов. Кристаллы просто осаживаются в перенасыщенной моче. Преципитация зависит от pH мочи: щелочная моча ускоряет преципитацию струвитных кристаллов; кислая моча ускоряет преципитацию цистиновых кристаллов.

Глюкоза

Почечный порог для глюкозы крови у большинства видов животных >180 mg/dl, у кошек 260–310 mg/dl. В здоровом состоянии уровень глюкозы не превышает почечный порог и отфильтрованная глюкоза реабсорбируется в проксимальных почечных канальцах. При превышении уровня глюкозы крови почечного порога развивается глюкозурия.

Тестовая подушка для определения содержит пероксидазы, при контакте с глюкозой она окисляется, что вызывает изменения цвета мочи от голубого до зеленого и далее до коричневого, в зависимости от количества глюкозы в образце. Образцы с содержанием глюкозы 250 mg/dl изменяют цвет от зеленого до голубого, содержание 500–1000 mg/dl изменяет цвет до зелено-коричневого, содержание более 2000 mg/dl изменяет цвет до средне коричневого.

В общем и целом, тестовые полоски дают более аккуратные показатели у кошек, нежели чем у собак, хотя ложноположительные результаты чаще отмечаются у кошек. У собак тестовые полоски дают высокий процент ложноотрицательных результатов и имеют тенденцию недооценивать концентрацию глюкозы в моче.

Блок. Вероятные причины глюкозурии

• Внутривенная инфузия растворов с содержанием глюкозы;
• Стрессовая гипергликемия (особенно у кошек);
• Сахарный диабет;
• Избыточное содержание эндогенных или экзогенных кортикостероидов (пр. гиперадренокортицизм);
• Дефект проксимального отдела почечных канальцев (синдром Фанкони, первичная почечная глюкозурия, повреждение при остром повреждении почек (ОПП, AKI).
• Некоторые нефротоксины (пр. аминогликозиды).

Блок. Причины ложного снижения уровня глюкозы в образцах мочи:

• охлажденная моча;
• большое количество аскорбиновой кислоты, тетрациклина (ввиду содержания аскорбиновой кислоты в формуле), кетонов, билирубина, формальдегида (метаболиты метенамина, используемые как мочевой антисептик);
• низкая pH мочи;
• повышенная концентрация мочевых солей.

Блок. Причины ложного повышения уровня глюкозы в образцах мочи:

• содержание в образце перекиси водорода, гипохлорита натрия (отбеливатель);
• содержание в моче кошек с обструкцией уретры неглюкозных окисляющих вещества;
• содержание галактозы, пентозы, фруктозы, салицилатов, пенициллина, некоторых цефалоспоринов, энрофлоксацина, рентген-контрастных средств, большое количество аскорбиновой кислоты или сульфаниламидов.

Примечания

• Идентификация глюкозурии служит прямым показанием к определению уровня глюкозы крови. В случае если уровень глюкозы крови нормален, но глюкозурия все же представлена – вероятна дисфункция проксимальных почечных канальцев (пересмотр истории на предмет нефротоксинов, определение азота мочевины крови и креатинина).
• Часть тестовых полосок для определения глюкозы требуют нанесение мочи сбоку нежели чем сверху. Это значит, что для получения аккуратных результатов при использовании пипеток следует наносить образец мочи сбоку (следует внимательно читать инструкцию производителя).
• Пигментурия может влиять на результаты тестов.
• Невозможно дифференцировать причины глюкозурии при помощи тест полосок.
• Кошки склонны к стрессовой гипергликемии; поэтому, ее трудно различить от вторичной к патологии. При подозрении на сахарный диабет у кошек может быть полезно определить фруктозамин сыворотки крови. При стрессовой глюкозурии показатели фруктозамина в норме, у пациентов с сахарным диабетом концентрация фруктозамина будет повышенной.

Кетоны

Кетоны – побочные продукты метаболизма жирных кислот (липолиз ведет к кетонемии). Клиническая значимость определена у трех типов кетонов: ацетон; ацетоуксусная кислота; β-гидроксибутират. Тестовые полоски не определяют β-гидроксибутират (он отвечает за ацидоз), первично они определяют ацетоуксусную кислоту и отчасти ацетон. Положительный результат ведет к изменения цвета от розово-бежевого до розового, глубокого розового и окончательно до красно-коричневого.

Блок. Причины кетонурии образца мочи:

• диабетический кетоацидоз (ДКА, DKA) *;
• длительный голод у незрелых пациентов *;
• диета низкая по углеводам и богатая по жиру;
• болезни накопления гликогена.
• препараты (отравление аспирином и стрептозотоцином).

* - частая причина.

Ложноположительные результаты могут отмечаться в обесцвеченной мочи, при назначении некоторых препаратов (феназопиридин, димеркапрол, аспирин, каптоприл, N-ацетилцистеин, вальпроиевая кислота, месна).

Примечания

• Тяжесть кетоацидоза не обязательно коррелирует со степенью кетонурии, большое количество кетонов в моче плюс летаргия и рвота характерны для кетоацидоза и требуют неотложных действий.
• Тепло, свет и влажность могут влиять на аккуратность результатов тестовых подушек. Хранение тестовых полосок согласно рекомендациям производителя крайне важно для аккуратности диагностики.
• Тестовые полоски для определения кетонов не выявляют β-гидроксибутировую кислоту. Это означает, что у некоторых пациентов с кетоацидозом тесты на определение кетонов будут отрицательными. При подозрении на кетоз но негативных результатах тест полосок, следует добавить к образцу несколько капель перекиси водорода, это превратит β- гидроксибутировую кислоту в ацетоацетат, который определяется тестовыми полосками (повторить анализ).
• Пигментурия может влиять на аккуратность результатов.

Билирубин

Билирубин - побочный продукт деградации гемоглобина, в частности, часть гема от гемоглобина преобразуется в билирубин. В печени, билирубин конъюгируется, часть выводится с желчью, часть выделяется с мочой после фильтрации на уровне клубочков. В дополнение к данному метаболическому пути, почки собак могут производить билирубин из гемоглобина. Поэтому, билирубинурия в малых количества у здоровых собак не является отклонением, тогда как у кошек наличие билирубина в моче расценивается как патология. Т.е. малое количество билирубина в моче собак с удельным весом ≥1.030 считается нормальным, тогда как у кошек любое количество билирубина считается патологическим. Кобели выделяют больше билирубина чем суки, после кастрации кобелей они выделяют меньше билирубина чем интактные кобели. Щенки выделяют мало билирубина с мочой, или он полностью отсутствует. Почечный порог выделения билирубина у кошек значительно выше, чем у собак (примерно в 9 раз).

Тестовая подушка для билирубина содержит соль диазония, при контакте изменяется цвет от бежевого до различных вариация грязно светло-коричневого.

Блок. Вероятные причины билирубинурии:

• гемолиз;
• гепатопатия;
• внепеченочная желчная обструкция;
• лихорадка;
• голод.

Повышенное количество билирубина в крови формирует у животного желтуху, которую следует обязательно расследовать (см. Желтуха собак и кошек – алгоритмический подход).

Примечания

• При хранении мочи при комнатной температуре или воздействии света на длительный период, билирубин мочи может конвертироваться в биливердин, который не определяется тестовыми полосками. Наличие биливердина дает ложноотрицательные результаты при определении билирубина.
• Значительная гемоглобинурия также может вызывать ложное снижение уровня билирубина посредством маскировки цветовых изменений тестовой подушки.
• Ложноотрицательные результаты также получаются при наличии в образце аскорбиновой кислоты.
• Ложноположительные результаты может отмечаться при лечении пациента синтетическими продуктами крови (пр. оксиглобин), рифампином, некоторыми сульфаниламидами и фенотиазинами.

Скрытая кровь (гем)

Тестовые полоски для определения скрытой крови содержат пероксидазу, когда группа гема (порфириновое кольцо + железо) входит в реакцию то происходит изменение цвета. Гемоглобин, метгемоглобин и миоглобин ведут к формированию положительного результата, что сопровождается изменением цвета от горчично-желтого до желтого с зелеными крапинками до лимонно-зеленого и окончательно до темно-зеленого. При изменении показания тестовой полоски обязательно показано микроскопическое исследование осадка мочи для определения клеток, и эти два метода обычно используются совместно.

Блок. Причины гемоглобинурии у кошек и собак:

• наличие эритроцитов (самая частая причина);
• тепловой удар;
• иммунно-опосредованная гемолитическая анемия (IMHA, АИГА);
• синдром диссеминированного внутрисосудистого свертывания (ДВС, DIC);
•тяжелая гипофосфатемия;
• заворот селезенки;
• послетрансфузионные реакции;
• отравление цинком;
• редкие дефицит ферментов эритроцитов (пр. дефицит фосфорфруктокиназы, дефицит пируваткиназы);

Блок. Причины миоглобинурии (обычно при тяжелом рабдомиолизе):

• тепловой удар;
• значительные физические нагрузки (пр. беговые гончие);
• ДТП с раздавлением мышц;
• длительное нахождение в эпилептическом статусе;
• тяжелая гипокалиемия (первично у кошек).

Блок. Источники крови при гематурии:

• внепочечные заболевания:
– мочеточник (пр. уролит мочеточника);
– мочевой пузырь (пр. цистит, уролиты мочевого, опухоль мочевого);
– простата (пр. простатит);
– уретра;
– ятрогенная гематурия (пр. цистоцентез, катетеризация);
• почечные заболевания;
– поликистозное заболевание почек;
– гломерулонефропатия;
– нефролит;
– пиелонефрит;
– опухоли почек;
– идиопатическая гематурия.

Блок. Причины ложноположительных результатов при определении скрытой крови.

• при сборе свободно выпущенной мочи может произойти контаминация фекалиями блох, при этом формируется ложно положительные результаты.
• ложноположительные результаты могут развиваться при контаминации образца мочи спермиями или семенной жидкостью.

Разграничение гематурии, гемоглобинурии и миоглобинурии при положительных результатах теста на скрытую кровь (гем)

Тест на скрытую кровь становится положительным при наличии гемоглобина, метгемоглобина, миоглобина и в меньшей степени при наличии эритроцитов. При положительных тестах необходимо определить, какое вещество вызывает положительность теста. При микроскопии осадка выявляются эритроциты, при их наличии в осадке у пациента отмечается микроскопическая гематурия. Это истинно если в осадке выявляются клетки тени. При отсутствии эритроцитов в осадке, у пациента может быть либо гемглобинурия, либо миоглобинурия.

Для разграничения гемоглобинурии от миоглобинурии, следует набрать образец крови у пациента и разделить для исследования плазмы (центрифугировать). При гемоглобинурии по причине внутрисосудистого гемолиза, плазма пациента становится от розовой до красной. Миоглобин же, быстро очищает из плазмы, поэтому плазма пациента с миоглобинурией чистая.

Белок

Большая часть белка, отфильтрованная клубочками эффективно реабсорбируется клетками эпителия проксимальных канальцев. Поэтому, моча здоровых животных обычно содержит либо минимальное количество белка, либо он вообще не определяется.

Белок мочи чаще измеряется полуколичественным методом при воздействии на реагенты тестовых полосок, иногда при помощи преципитации при воздействии сульфосалициловой кислоты. Тестовые полоски охотнее воспринимают альбумин чем глобулин, и не реагируют на белки Бенса-Джонса (выявляются при преципитации или более сложными методами). Хотя полуколичественные тесты хорошо коррелируют с истинными показателями, спектрофотометрический метод дает более точные результаты.

При контакте образца мочи с содержанием белка с тестовой подушкой, она реагирует с синим тетробромфенолом (tetrabromophenol blue). Отрицательно заряженные белок связывается с подушкой, это ведет к изменению цвета от светлого желто-зеленого до грязно зеленого и темно-зеленого. Реагент определяет лучше определяет альбумин чем глобулин. Часть белков не определяется совсем (пр. белки Бенса-Джонса).

Шкала оценки содержания белка обычно оценивается как следовые количества, +1 (30 mg/dl), ++ (100 mg/dl), +++ (300 mg/dl), или ++++ (2000 mg/dl или более).

Малое количество альбумина может содержаться в моче здоровых собак и кошек, при концентрации мочи количество увеличивается. Так, количество белка в моче в районе 100 mg/dl (++) при удельном весе 1.060 не рассматривается патологическим. Протеинурия должна всегда интерпретироваться совместно с удельным весом мочи, т.к. скрининговые тесты являются полуколичественными. Так, следовые реакции при удельном весе мочи 1.010 означают что при удельном весе 1.030 концентрация белка увеличится.

При возникновении протеинурии, он может быть пред-почечной, почечной и пост-почечной.

Пред-почечная протеинурия происходит при повышении концентрации малых белков в плазме, и они переполняют клубочки. Ввиду малого размера белков, они охотно фильтруется в клубочках. Если они представлены в плазме в больших количествах они также появляются в клубочковом фильтрате в высокой концентрации. Ввиду большого количества они не все реабсорбируются в канальцах и избыток появляется в моче.

Блок. Причины пре-ренальной протеинурии

Основные причины:
• обезвоживание;
• возбуждение;
• лихорадка;
• избыточные упражнения;
• стресс.

Другие причины:
• поедание молозива (высокое содержание циркулирующих антител);
• воспаление (высвобождение протеинов острой фазы);
• внутрисосудистый гемолиз (гемоглобинурия);
• тяжелый рабдомиолиз (миоглобинурия).

Множественная миелома также вызывает преренальную протеинурия, однако, протеины Бенса-Джонса не определяется тестовыми полосками и у таких пациентов фиксируется ложноотрицательный результат.

Блок. Причины почечной протеинурии:

• заболевания клубочков;
• почечный амилоидоз;
• гломерулонефрит;
• болезни проксимальных канальцев;
• синдром Фанкони;
• почечная ишемия;
• нефротоксины (см. ниже);
• сочетание болезней клубочков и канальцев.

Блок. Лекарства, способные вызывать почечную протеинурию.

• Любые препараты, вызывающие повреждение клубочков или канальцев могут вести к протеинурии.
• Аминогликозиды (неомицин, канамицин, гентамицин, амикацин, тобрамицин).
• НПВС.*
• Амфотерицин B.*
• Цисплатин.*
• Циклофосфамид.
• Декстраны (низкомолекулярный вес).
• Полимиксин В. *
• Рентген-контрастные вещества (ложно-положительные результаты).
• Сульфониламиды.
• Тетрациклины.
• Талий.
• Тиазиды.
• Цинк.

* - распространенные причины.

Блок. Причины пост-ренальной протеинурии:

• инфекция мочевыводящих путей;
• воспаление и/или геморрагии мочевыводящих путей;
• воспаление и/или кровотечение репродуктивного тракта;
• контаминация кровью вторично к методу сбора (пр. цистоцентез).

• Пигментурия может повлиять на аккуратность исследования.
• Тест полоски охотнее определяют альбумин, чем глобулин.
• Длительное воздействие мочи на тестовую подушку (больше рекомендованного производителем) при определении белка может давать ложноположительные результаты.
• pH 8.0 и больше может давать ложноположительные результаты указывая на небольшую степень протеинурии.
• Ложноположительные тесты могут отмечаться при контаминации мочи сперматозоидами или семенной жидкостью.

Последующие тесты

При наличии протеинурии на основании анализа тестовых полосок, следующий шаг – исследовать мочевой осадок на предмет пост-почечных изменений (воспаление, геморрагии и/или инфекция). При наличии вышеназванных изменений, пациент должен получать лечение на предмет подлежащих проблем и при повторном исследовании мочи проблемы должны разрешиться.

С случае если осадок не активный, то вероятность пост-почечных причин мала. В таких случаях важно рассмотреть объем теряемого белка с мочой и попытаться идентифицировать источник. В таких случаях требуются продвинутое тестирование, обычно измеряется соотношение протеин/креатинин, что требует отправления образца в стороннюю лабораторию. Соотношение протеин/креатинин определяет количественно объем белка в моче, результаты помогают определить степень протеинурии и разграничить клубочковую и канальцевую протеинурию.

У здоровых собак соотношение протеин/креатинин обычно <0.5. В отсутствие азотемии соотношение протеин/креатинин в районе 0.5-1.0 считается пограничным и должно отслеживаться на предмет дальнейшего прогресса протеинурии. Соотношение протеин/креатинин >1.0 при отсутствии азотемии требует дальнейшего расследования. У кошек данные сходны, но следует помнить, что у них соотношение протеин/креатинин в здоровом состоянии может достигать 0.6. Высокое соотношение протеин/креатинин (более 2.0–2.5) характерно для клубочковой протеинурии, при значении соотношения протеин/креатинин

Следует помнить, что тестовые полоски и тесты преципитации с сульфосалициловой кислотой дают высокий уровень ложноположительных результатов у кошек. Т.е. данные тесты не отличаются аккуратностью при количественном определении, и для точного определения потерь белка лучше использовать измерение соотношение белка/креатинина мочи в сторонней лаборатории.

Важные замечания

• Следует удалять избытки мочи с тестовой полоски после окунания для избегания затекания тестовых реагентов с одной подушки на другую.
• Всегда следует считывать показатели исходя из времени, рекомендованному производителем, нарушение времени чтения результатов может исказить аккуратность.
• Всегда стоит учитывать метод сбора мочи при макроскопической гематурии и/или при выявлении скрытой крови (гем). Ятрогенная гематурия может развиваться при цистоцентезе и/или катетеризации уретры. В таких случаях, кровотечение минимальное, осадок мочи должен отражать не более 10–20 эритроцитов в высоком поле зрения (HPF).
• В случае, если гематурия представлена как в образцах, полученных при свободном испускании, так и при цистоцентезе, тогда рассматриваются одно или более источников кровотечения: почки, мочеточник, мочевой пузырь, проксимальная уретра, простата. В случае если гематурия идентифицируется только при свободном испускании, но не при цистоцентезе, значит источник кровотечения распложен дистально к мочевому пузырю: влагалище, дистальная уретра, пенис.

• Тестовые полоски неаккуратны при измерении удельного веса мочи, при необходимости получения точных значений pH образца мочи, следует приобретать pH-метр.
• Тестовые полоски для определения уробилиногена (гуманные) не обладают клинической значимостью и показатели должны быть игнорированы.
• Тестовые полоски для определения нитритов и эстеразы лейкоцитов (гуманные) дают неаккуратные результаты и должны быть игнорированы.

Приложение. Хранение контейнера с тестовыми полосками

• Контейнер с тестовыми полосками должен быть плотно закрыт для предотвращения длительного воздействия воздуха помещения и света на тестовые полоски. Тестовые подушки для определения глюкозы и скрытой крови (гем) особенно чувствительны к окислению.

• Избегать воздействия повышенной влажности на контейнер, его следует содержать в сухом и прохладном месте.

• Перед использованием тестовых полосок их следует визуально инспектировать. В случае если подушки тестовых плосок изменили цвет или потемнели до использования – то следует избегать их использования.

• Проверять срок годности тестовых полосок, избегать использования просроченных тестовых полосок, т.к. это может повлиять на аккуратность исследования. В частности, тестовые полоски для определения глюкозы при просрочке часто дают ложноотрицательные результаты.

• Масло и дебрис с пальцев при попадании на тестовые полоски могут влиять на результаты исследования, поэтому не стоит прикасаться к подушкам тестовых полосок.

Валерий Шубин, ветеринарный врач, г. Балаково